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Fl6000 fluorimètre à chlorophylle à double modulation
Fl6000 fluorimètre à chlorophylle à double modulation
Détails du produit

FL6000Fluorimètre à chlorophylle à double modulation

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FL6000Le fluorimètre de chlorophylle à double modulation est la dernière version améliorée du fluorimètre de chlorophylle à double modulation fl3500, spécialement conçu pour la recherche scientifique puissante sur la photosynthèse des microalgues, des chloroplastes ou des suspensions de kystes comme les algues bleu - vert ou vert. L'instrument dispose d'un contrôle de mesure à deux canaux pour contrôler la température de l'échantillon de mesure et est équipé d'une lumière à retournement unique (STF), intégré dans une variété de programmes de mesure modifiables par l'utilisateur lui - même, qui peuvent effectuer diverses études mécaniques approfondies sur la fluorescence de la chlorophylle actuellement au niveau international. Sa structure de base est une tête de mesure optique contenant une coupelle d'échantillon standard en suspension, 3 groupes de sources lumineuses LED intégrées et 1 détecteur de signal à diode pin à conversion ad 1 MHz / 16 bits. Le gain et le temps d'intégration de la conversion ad peuvent être contrôlés par logiciel. La résolution temporelle du détecteur pour mesurer le signal de fluorescence de la chlorophylle peut atteindre 4 µs (1 µs pour la version rapide).

Domaines d'application:

·Caractérisation photosynthétique des plantes et dépistage des troubles métaboliques

·Détection des stress biotiques et abiotiques

·Étude de la résistance au stress ou de la susceptibilité des plantes

·Étude de confusion métabolique

·Étude du mécanisme de travail des systèmes photosynthétiques

·Étude des stratégies d'adaptation physiologique photosynthétique des plantes stressées

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échantillons typiques:

·Algues bleues (bactéries bleues)

·Algues vertes

·Suspension de chloroplastes

·Suspension de kystes

·Fragments de plantes

Caractéristiques fonctionnelles:

·Procédures de mesure telles que la mesure d'induction de fluorescence de la chlorophylle intégrée, la mesure PAM (Pulse Modulation), la mesure cinétique de fluorescence rapide ojip, la cinétique de ré - oxydation QA, la transition d'état s, l'extinction par fluorescence de la chlorophylle, etc., sont reconnues comme le fluorimètre de la chlorophylle Le plus complet au monde.

·Technologie de double modulation avec lumière photochimique modulée et lumière photochimique continue pour les mesures STF (stroboscopique mono - rotation), TTF (stroboscopique bi - rotation) et MTF (stroboscopique Multi - rotation) et la technologie frr personnalisée (Fast repetition rate)

·Version standard résolution temporelle jusqu'à 4 µs, version rapideJusqu'à 1 µs, c'est le fluorimètre de chlorophylle avec la résolution temporelle la plus élevée actuellement

·L'unité de contrôle est à double canal, peut être connecté à un capteur de température pour le contrôle de la température, à une unité de mesure de l'oxygène pour la mesure de la réaction Hill, etc.

·Très haute sensibilité avec une limite de détection minimale de 100 ng chla / l

·Mesure de la lumière, la lumière actinique, la couleur de la source lumineuse saturée SLR, l'intensité peut être personnalisée

·L'unité principale est équipée d'un écran tactile couleur pour voir les courbes de fluorescence en temps réel

Paramètres techniques:

·Procédure expérimentale: mesure des effets induits par fluorescence de la chlorophylle de Kautsky; PAM (modulation d'impulsion)Cinétique de trempe par fluorescenceMesure; Mesure cinétique de fluorescence rapide ojip; QA – cinétique de réoxydation; Transition d'état s; Induction rapide de fluorescence de la chlorophylle

  • Paramètres de fluorescence:

uPAMMesure de la cinétique d'extinction par fluorescence: mesure de la courbe cinétique d'extinction par fluorescence, F peut être calculé0Fm, Fv et F0«,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRPlus de 50 paramètres de fluorescence de la chlorophylle;

uOJIPMesure cinétique de fluorescence rapide: mesure de la courbe cinétique de fluorescence rapide ojip, F peut être calculé0FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F0avec FV/F0Fv / Fm, M0, Zone, Zone fixe, SM, SS, N, Phi_P0et Psi_0à Phi_E0Le Phi_D0Phi_Pav, ABS / RC, TR0/ RCet0/ RCet DI0/ RCPlus de 20 paramètres pertinents;

uQA– cinétique de ré - oxydation QA: mesure des courbes cinétiques de ré - oxydation QA pour ajuster les amplitudes (A1, A2, A3) et les constantes de temps (T1, T2, T3) respectives de la phase rapide, de la phase intermédiaire et de la phase lente au cours du processus de ré - oxydation QA

uSTransition d'état (Test S - State): mesure de la courbe d'atténuation de la fluorescence du test S - State pour le calcul du système à lumière inactive II (PSII)X) Nombre de centres de réaction

uFlash Fluorescence induction (ffl, Fast Edition uniquement): pour le calcul de la surface effective de l'antenne, la connectivité de l'antenne, etc.

uFournit la fonction de protocole personnalisé de l'utilisateur qui permet l'hétérogénéité d'antenne PSII PSIIαAvec PSIIbêtaAnalyse, section effective d'antenne PSII (sPSII), mesure de paramètres tels que (fonction de personnalisation en option)

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uQA– courbes cinétiques de réoxydation etEssai d'état SCourbe d'atténuation de fluorescence (Li2010) et

·Résolution temporelle (fréquence d'échantillonnage): détecteur haute sensibilité avec une résolution temporelle de 4 µs pour la version standard et de 1 µs pour la version rapide

·Limite de détection minimale: version standard 100 ng chla / L, version rapide 1 μg chla / l

·Unité de contrôle: Équipé d'un écran tactile couleur pour voir les courbes de fluorescence en temps réel

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·Chambre de mesure:

oMesure du Flash: lumière rouge - orange à 623 nm et lumière bleue à 460 nm, temps de flash de 2 à 5 µs

oFlash saturé à rotation unique: intensité lumineuse maximale de 170 000 µmol (photos) / m².s, temps de flash de 20 à 50 µs

oLumière photochimique continue: intensité lumineuse maximale 3500 µmol (photos) / m².s

oDétecteur de fluorescence: photodiode pin

oADConvertisseur: 16bit

oTube échantillon: surface inférieure 10 x 10 mm, Volume 4 ml

  • Chambre de mesure personnalisée (en option): mesure personnalisée de la lumière, du flash saturé et de la couleur de la lumière photochimique (bleu, Cyan, ambre, etc.) et de la bande de détection (chla, chlb) séparément

  • Source de lumière infrarouge lointain (en option): pour mesurer f0', longueur d'onde 730 nm

·Module de mesure d'oxygène (en option): mesure de la libération d'oxygène par les algues

·Contrôle de la température (en option): régulateur de température tr 6000, plage de température contrôlée 5 - 60 ° C, précision 0,1 ° C

  • Agitation électromagnétique (en option): pour le mélange de l'échantillon, empêche la précipitation de l'échantillon, peut être réglée manuellement ou contrôlée automatiquement par logiciel

  • Interface de communication: port série RS232 / USB

FluorWinLogiciel: définition ou création de protocoles expérimentaux, réglages de contrôle des sources lumineuses, sortie de données, traitement analytique et affichage de diagrammes

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Applications typiques:

1. Le chercheur Wang Qiang de l'Institut des organismes aquatiques de l'ASC a utilisé un fluorimètre à chlorophylle fl3500 (modèle antérieur au fl6000) et un système de thermoluminescence des plantes TL pour démontrer que le stress nitrite affectait d'abord synechocystis sp. PCC 6803 PSII côté récepteur (Zhan X, et al., 2017). Cette étude du mécanisme profond de la photosynthèse nécessite souvent que les deux instruments fonctionnent ensemble.

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2.Le chercheur Pan Loud de l'Institut d'écologie et de géographie du Xinjiang de l'ASC et son groupe thématique ont utilisé le fluorimètre à chlorophylle fl3500 (modèle antérieur au fl6000) pour mener des recherches approfondies sur la toxicologie des algues par diverses substances nocives telles que les métaux lourds, les sels, les composés toxiques, les herbicides, Les pesticides, les antibiotiques et autres dans l'environnement. Les mécanismes toxicologiques des dommages causés aux systèmes photosynthétiques d'algues par différentes concentrations et durées de traitement, ainsi que leur impact écologique, ont été entièrement révélés grâce aux procédures de mesure de la fluorescence de la chlorophylle telles que la mesure cinétique rapide de fluorescence ojip haute résolution, la cinétique de ré - oxydation QA, la transition d'état s et bien d'autres, exclusives au fl3500. À l'heure actuelle, Pan Loud Subject Group a publié plus de vingt articles de haut niveau dans des revues SCI internationales et nationales utilisant le fl3500 (modèle antérieur au fl6000).

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Origine: tchèque

Références:

1. Manaa A, et al. 2019. Tolérance à la salinité du quinoa (Quinoa de ChenopodiumWilld) évaluée par l'ultrastructure des chloroplastes et les performances photosynthétiques. Botanie environnementale et expérimentale 162: 103-114

2. Yu Z, et al. 2019. La sensibilité de Chlamydomonas reinhardtii au stress au cadmium est associée à la phototaxie. Sciences de l'environnement: processus et impacts 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019. Mécanismes moléculaires d'acclimatation et d'adaptation à la température chez les diatomes marines. La revue ISME, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, et al. 2019. Résoudre l'eutrophisation des cyanobactéries nuisantes par la biotechnologie. Sciences appliquées 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Régulation de la fonction PSII dansCyanothécesp. ATCC 51142 pendant un cycle clair-noir. Recherche sur la photosynthèse 139(1–3): 461–473

6. Smythers A L, et al. 2019. Caractériser l'effet de Poast surChlorelle vulgarisUn organisme non cible. Chimosphère 219 : 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Modulation du protéome thylacoïdienne dans les pois cultivés à différentes irradiances : profilage protéomique quantitatiforganisme modèle aidé par l'intégration de données transcriptomiques. Journal des plantes 96(4): 786-800

8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Système d'induction et de relaxation de fluorescence de chlorophylle pour la surveillance continue de la capacité photosynthétique dans les photobioréacteurs. Physiol Plantarum. DOI : 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simulation de la cinétique de la hausse et de la décomposition de la fluorescence de la chlorophylle et des changements d'absorbance liés à P700 en utilisant une méthode cinétique de Monte-Carlo basée sur des règles. Recherche sur la photosynthèse. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye J J, et al. 2018. PsbY est nécessaire pour prévenir les photodommages au photosystème II dans un mutant deSynécocystesp. PCC 6803. Photosynthèse, 56(1), 200-209.

11.Bonisteel E M, et al. 2018. Les différences spécifiques de souche dans les taux de réparation du Photosystème II chez les picocyanobactéries sont corrélées à des différences dans les niveaux de protéines FtsH et les schémas d'expression isoforme. PLoS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X, et al. 2018. Réponses transcriptomiques de la cyanobactérie marineProchlorococcusproduits de lyse virale. Microbiologie de l'environnement, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. La sensibilité aux protons de l'antenne détermine la stratégie de récolte de lumière photosynthétique, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493

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